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同位素含量测定通常不是直接计算某种同位素的“含量”,而是计算样品中两种稳定同位素的比值相对于一个比值的偏差。这个偏差用δ值(DeltaValue)表示,单位是千分率(‰)。这是地质学、环境科学、生态学等领域的表达方式。公式:δX=[(R_sample/R_standard)-1]×1000‰公式解释:1.δX:这是你要计算的值,表示样品相对于标准的同位素偏差。`X`代表具体的同位素对,比如δ13C(碳-13)、δ1?O(氧-18)、δD(,氢-2)等。2.R_sample:这是你的样品中两种同位素的比值。对于碳,就是13C/12C;对于氧,就是1?O/1?O;对于氢,就是D/H(2H/1H)。3.R_standard:这是国际上公认的标准物质对应的同位素比值。不同的元素有不同的标准:*碳(δ13C):VPDB(ViennaPeeDeeBelemnite),R_standard≈0.011180*氧(δ1?O):VSMOW(ViennaStandardMeanOceanWater)或VPDB(用于碳酸盐),常用VSMOW,R_standard≈0.0020052*氢(δD):VSMOW,R_standard≈0.000155764.(R_sample/R_standard):计算样品比值与标准比值的比率。5.[...-1]:计算这个比率与1的偏差(即样品比值是标准比值的多少倍再减去1倍本身)。6.×1000:将这个偏差放大1000倍,表示成千分率(‰)。这样小的偏差就能用更直观的数字表示。关键点:*δ值含义:*正值(δX>0‰):表示样品中较重的同位素(如13C,1?O,D)相对于标准更富集。样品比值`R_sample`>标准比值`R_standard`。*负值(δX*零值(δX=0‰):表示样品的同位素组成与标准完全相同。*实际测量:现代质谱仪通常直接测量样品和已知标准(与上述比对过)的气体离子流强度比,并通过复杂的校准程序,终直接输出样品的δ值。公式中的`R_sample`和`R_standard`是理论计算的基础,但用户通常拿到的是仪器计算好的δ值。---案例演示:计算植物叶片的δ13C值背景:你想知道一株玉米叶片的碳同位素组成。植物光合作用途径会影响其δ13C值。步骤:1.获取样品比值(R_sample):你将玉米叶片样品经过处理(干燥、研磨),送入稳定同位素质谱仪分析。仪器内部通过与实验室工作标准比对,终给出样品的13C/12C比值。假设你得到:R_sample(玉米)=0.0112372.确定标准比值(R_standard):对于碳同位素,是VPDB。其公认的13C/12C比值是:R_standard(VPDB)=0.0111803.应用公式计算δ13C:*δ13C=[(R_sample/R_standard)-1]×1000‰*δ13C=[(0.011237/0.011180)-1]×1000‰*δ13C=[(1.005098...)-1]×1000‰(先计算比值)*δ13C=[0.005098...]×1000‰(再减1)*δ13C≈5.098‰(乘以1000)结果解释:*计算得到的δ13C≈+5.1‰(通常四舍五入保留一位小数)。*正值(+5.1‰)表示:相比于VPDB标准,这片玉米叶片的13C同位素更富集(或者说12C相对少一些)。*实际意义:玉米是C4植物。C4植物典型的δ13C范围大约是-10‰到-14‰?等等!这里似乎出现了矛盾?不对!C4植物应该比C3植物更富集13C,同位素比值第三方机构,但仍然是负值?让我们澄清一下:*VPDB标准本身富含13C(它是一个海洋化石)。*所有植物都强烈偏好吸收更轻的12C进行光合作用,所以它们的δ13C值都是负值!*C3植物(如小麦、水稻、树木)δ13C≈-22‰到-35‰(平均值约-27‰)*C4植物(如玉米、甘蔗、高粱)δ13C≈-9‰到-19‰(平均值约-13‰)*错误发现:案例中计算出的+5.1‰是不可能的!植物不可能比富含13C的海洋化石标准还富集13C。问题出在设定的`R_sample`值上。0.011237比VPDB的0.011180大,这会导致正δ值,不符合植物实际。修正案例(使用更现实的数值):1.获取样品比值(R_sample):假设仪器给出的玉米叶片真实的13C/12C比值是:R_sample(玉米)=0.011070(这个值比VPDB标准小,预示负δ值)2.标准比值(R_standard)不变:R_standard(VPDB)=0.0111803.应用公式:*δ13C=[(0.011070/0.011180)-1]×1000‰*δ13C=[(0.990161...)-1]×1000‰*δ13C=[-0.009839...]×1000‰*δ13C≈-9.8‰修正后结果解释:*计算得到的δ13C≈-9.8‰。*负值(-9.8‰)表示:相比于VPDB标准,这片玉米叶片的13C同位素更贫乏(12C更富集)。*这个值落在典型的C4植物δ13C范围(-9‰到-19‰)内,符合预期。玉米通过C4光合途径,比C3植物能更有效地利用CO?,导致其分馏程度较小,所以δ13C值相对较高(负得少一些,这里是-9.8‰而不是C3的-27‰左右)。总结步骤:1.获得样品中目标同位素对的实测比值(`R_sample`)。2.查找该元素对应的比值(`R_standard`)。3.将两个值代入公式:δX=[(R_sample/R_standard)-1]×1000‰4.计算结果,单位是‰。5.根据δ值的正负和大小,结合研究对象的具体背景知识,解释其同位素组成特征及其反映的地质、环境或生物过程信息。记住,公式本身很简单,关键在于理解δ值的含义(相对偏差)和正负号所代表的意义(重同位素富集或贫乏)。实际应用中,你通常直接得到的是δ值报告。
碳 13 同位素比值测定测蜂蜜:怎么通过比值判断是否掺假? GB/T 18932.12 参考。
根据GB/T18932.12《蜂蜜中碳-4植物糖含量测定方法稳定碳同位素比率法》,利用碳-13同位素比值(δ13C)判断蜂蜜是否掺假的原理和方法如下:1.基本原理:植物光合作用途径的差异*C3植物:大部分蜜源植物(如槐树、椴树、油菜、紫云英、柑橘等)属于C3植物。它们光合作用固定二氧化碳的途径导致其产物(花蜜、花粉)的碳-13同位素比值较负,通常范围在-22‰到-33‰之间(相对于VPDB)。*C4植物:玉米、甘蔗、高粱等属于C4植物。其光合途径导致产物(如玉米糖浆、蔗糖)的碳-13同位素比值较正,同位素比值多少钱,通常范围在-9‰到-19‰之间。*蜂蜜的本质:纯正蜂蜜是蜜蜂采集C3植物的花蜜酿造而成,因此其蜂蜜本身的δ13C值应与其蜜源植物的C3特征一致(偏负)。*掺假物质:常见的廉价掺假物是来源于C4植物的糖浆(如高果糖玉米糖浆HFCS、蔗糖糖浆)。这些物质的δ13C值明显偏正。2.GB/T18932.12的检测逻辑:内部比对法该标准的关键创新和判断依据不是单独看蜂蜜的δ13C值,而是比较蜂蜜本身与其所含的蜂蜜蛋白质的δ13C值差异。*蜂蜜蛋白质的来源:蜂蜜中天然存在的少量蛋白质主要来源于蜜蜂本身(在酿造过程中混入)以及采集的花粉。无论蜜源植物是哪种,蜜蜂和花粉都来源于C3植物(蜜蜂以C3植物的花蜜、花粉为食)。因此,蜂蜜蛋白质的δ13C值稳定地反映了C3植物的特征(偏负)。*检测步骤:1.分离与纯化:从蜂蜜样品中分离并纯化出蜂蜜本身(主要成分是糖)和蜂蜜蛋白质。2.δ13C测定:使用稳定同位素比率质谱仪分别测定:*蜂蜜本身的δ13C值(δ13C?????)*蜂蜜蛋白质的δ13C值(δ13C???????)3.计算差值(Δδ13C):`Δδ13C=δ13C???????-δ13C?????`*判断依据(掺假阈值):*纯蜂蜜:由于蜂蜜糖分和蛋白质都来源于C3植物,它们的δ13C值应该非常接近。理论上Δδ13C应该接近于0。考虑到自然变异和实验误差,规定:如果Δδ13C≤-1.0‰,则判定样品为未掺入C4植物糖的蜂蜜。*掺入C4糖浆的蜂蜜:当掺入C4植物糖浆(如玉米糖浆)时:*δ13C?????会显著升高(变得更正,因为掺入了偏正的C4糖)。*δ13C???????基本保持不变(仍然反映C3特征,偏负)。*因此,`Δδ13C=(较负的值)-(较正的值)=一个更大的负数`,即Δδ13C会显著小于-1.0‰。*结论:如果Δδ13C>-1.0‰(即差值小于-1.0‰,例如-1.5‰,衢州同位素比值,-2.0‰等),则判定该蜂蜜样品中掺入了C4植物糖。3.优势与注意事项:*优势:内部比对法有效消除了不同蜜源、不同地区、不同年份C3植物本身δ13C自然变异带来的影响,因为蛋白质和糖分处于同一环境。这大大提高了检测的准确性和普适性。*特殊蜜源(C4蜜源):该方法主要针对掺入C4糖浆。如果蜂蜜本身来源于少数C4蜜源植物(如中国的荞麦蜜在某些地区可能表现出C4特征),其蜂蜜和蛋白的δ13C值都会偏正,Δδ13C可能仍在正常范围。附录A提供了荞麦蜜的判定方法(需单独测定纯荞麦蜜蛋白的δ13C作为基准)。*C3糖浆掺假:该方法无法直接检测掺入来源于C3植物的糖浆(如甜菜糖浆、大米糖浆、木薯糖浆等),因为它们的δ13C值与真蜂蜜接近。检测这类掺假需要其他方法(如SMRI、LC-IRMS等)。*应用:GB/T18932.12是检测蜂蜜中是否掺入C4植物糖(主要是玉米和甘蔗来源的糖浆)的标准方法,广泛应用于市场监管、企业质检和进出口检验。总结来说:通过GB/T18932.12的碳-13同位素比值测定法判断蜂蜜是否掺假(C4糖浆),关键是计算蜂蜜蛋白质δ13C与蜂蜜本身δ13C的差值(Δδ13C)。若Δδ13C>-1.0‰,则判定未掺入C4植物糖;若Δδ13C≤-1.0‰,则判定掺入了C4植物糖。该方法利用蜂蜜内部蛋白质作为C3基准,地筛查出常见的玉米糖浆等掺假物。

对于同位素含量测定(尤其是金属同位素、性同位素等)的水体样品,选择合适的保存容器至关重要,以防止目标同位素被容器壁吸附或发生其他反应导致浓度变化。以下是关键信息:容器材质:避免吸附的两种关键材质1.高密度聚乙烯(High-DensityPolyethylene,HDPE):*优点:*惰性表面:HDPE具有高度非极性的碳氢聚合物结构,表面活性位点少,对大多数金属阳离子(如Pb,Cd,Cu,Zn,U,Th,Ra等)、阴离子(如I?,PO?3?等)以及许多有机分子的吸附作用非常微弱。*广泛适用性:是环境水样(地表水、地下水、海水)、饮用水等用于痕量金属和性核素分析的标准容器材质,尤其适用于ICP-MS、α/β能谱等分析。*耐用性:具有良好的机械强度和化学稳定性(耐酸、碱、盐),不易。*成本效益:相对便宜且易于获得。*注意事项:*确保使用全新、未经污染的瓶子。*对于某些极痕量分析或特定有机物,可能需要选择纯度更高的级别(如“痕量金属级”或“核级”)。*避免使用含有回收料的HDPE瓶,以防杂质渗出。2.聚四氟乙烯(Polytetrafluoroethylene,PTFE):*优点:*惰性:拥有所有聚合物中的表面能和强的化学惰性。其碳-氟键异常稳定,几乎不吸附任何物质,包括难处理的离子(如Hg2?)和疏水性有机化合物。*超高纯度:非常适合超痕量分析、对吸附极其敏感的同位素(如某些形态的、铂族元素)或要求洁净的场合(如高纯水分析)。*耐高温和强腐蚀性试剂:可用于需要强酸(王水、HF)保存或消解的样品。*缺点:*昂贵:成本远高于HDPE。*加工困难:不易制成形状复杂的容器或大口径瓶。常见的PTFE容器形式是瓶子、广口瓶或用于分装储存的小瓶。*柔软易变形:纯PTFE较软,不如HDPE坚固耐用,不适合需要频繁运输或承受较大压力的野外采样。*应用:通常用于实验室内的样品分装、储存或消解,或在野外采集对吸附要求极高的特殊样品时使用。FEP(氟化乙烯,PTFE的一种)材质的瓶子柔韧性更好,更接近HDPE瓶的使用体验,但成本仍然很高。为什么避免其他材质?*玻璃(Glass-尤其是钠钙玻璃):*主要问题:吸附和离子交换。玻璃表面富含硅羟基(-Si-OH),是强吸附位点,极易吸附金属阳离子(如Pb2?,Cu2?,Zn2?,Al3?等)。玻璃中的金属离子(如Na?,K?,Ca2?,B3?)也可能溶出或与样品离子交换,改变样品组成和同位素比值。硼硅玻璃(如Pyrex)耐热性好,但吸附问题依然显著,不推荐用于痕量金属同位素分析。*例外:对于某些特定分析(如溶解无机碳的δ13C分析、水本身的δ1?O/δ2H分析、氚分析),使用玻璃瓶(有时需化处理)是可以接受的,因为目标物(水分子、CO?)不易被吸附。但需严格评估。*低密度聚乙烯(LDPE):虽然比玻璃好,但比HDPE更软、更易透气(可能损失挥发性组分),且其分子结构不如HDPE紧密,理论上对某些物质的吸附或渗透可能略高于HDPE。HDPE通常是更优选择。*聚(Polypropylene,PP):耐化学性好,但硬度和脆性可能不如HDPE,且对某些痕量元素的吸附性能可能略逊于HDPE。有时用于替代,但HDPE仍是标准推荐。*聚碳酸酯(Polycarbonate,PC):通常不推荐,可能含有双酚A等添加剂,且对某些离子可能有吸附。*金属容器:禁止,极易发生污染和吸附。样品保存关键要点(与容器选择同样重要):1.容器预处理:所有容器(尤其是新瓶)必须经过严格的清洗程序。标准流程通常包括:用实验室级洗涤剂清洗→大量自来水冲洗→稀酸(如10%HNO?)浸泡数天→大量超纯水冲洗→干燥(清洁环境下风干或烘干)。对于痕量分析,清洗要求极其严格。2.酸化保存(对于大多数金属同位素):采集后立即酸化样品是防止吸附和水解沉淀的方法。通常使用高纯(HNO?)酸化至pH3.样品瓶装满:采样时尽量装满容器,同位素比值中心,减少顶空(空气),以降低氧化风险或挥发性组分的损失。4.避免污染:采样过程严格防止引入外来污染(手、灰尘、采样设备)。使用厂家预清洗并密封的采样瓶。采样时戴无粉手套。5.冷藏/避光:根据分析目标物的要求,样品采集后可能需要立即冷藏(4°C)或冷冻保存,并避光,以抑制微生物活动和光化学反应。运输过程也需保持低温。6.尽快分析:即使采取了保存措施,样品也应尽快运抵实验室进行分析。保存时间取决于目标同位素和分析方法。总结:*、的材质是HDPE(高密度聚乙烯)瓶。它对大多数同位素的吸附性低,耐用且经济。*对于吸附问题极其严重或要求超痕量分析的同位素,PTFE(聚四氟乙烯)是惰性的选择,尽管成本高昂且使用不便。*避免使用普通玻璃瓶保存金属或易吸附同位素的水样。*容器材质的选择必须与严格的清洗程序、恰当的酸化保存(对金属同位素)、冷藏、避免污染等措施相结合,才能确保样品在分析前保持原始的同位素组成和含量。
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